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    FluorCam葉綠素?zé)晒獬上瘢篛JIP與QA-再氧化動力學(xué)曲線分析

    發(fā)布時間: 2021-11-01  點(diǎn)擊次數(shù): 4994次

    FluorCam葉綠素?zé)晒獬上窦夹g(shù):

    OJIP快速熒光動力學(xué)曲線與QA-再氧化動力學(xué)曲線成像分析


    PAM熒光淬滅動力學(xué)曲線、OJIP快速熒光動力學(xué)曲線和QA-再氧化動力學(xué)曲線分析是葉綠素?zé)晒饧夹g(shù)的三大主要測量技術(shù)路線,分別對應(yīng)光系統(tǒng)運(yùn)行機(jī)理的不同方面。與PAM熒光淬滅分析主要針對光系統(tǒng)運(yùn)行中較慢的光合穩(wěn)態(tài)與熒光淬滅不同,OJIP快速熒光動力學(xué)曲線和QA-再氧化動力學(xué)曲線分析都需要非常高的檢測速度。

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    目前,能夠同時完成這三種熒光動力學(xué)曲線測量的儀器只有FL6000雙調(diào)制葉綠素?zé)晒鈨x、 FluorCam封閉式熒光成像系統(tǒng)和FKM多光譜熒光動態(tài)顯微成像系統(tǒng)。而由于OJIP快速熒光動力學(xué)曲線和QA-再氧化動力學(xué)曲線對技術(shù)的特殊要求,對這兩種曲線的成像分析更是只有FluorCam封閉式熒光成像系統(tǒng)和FKM多光譜熒光動態(tài)顯微成像系統(tǒng)能夠?qū)崿F(xiàn)。

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    OJIP快速熒光動力學(xué)曲線測量要求對樣品經(jīng)過暗適應(yīng)后的最小熒光上升到最大熒光這一過程進(jìn)行快速檢測。這一個過程一般在1-2秒即可完成,儀器檢測器的最高靈敏度要求達(dá)到100 000/秒以上。OJIP快速熒光動力學(xué)曲線部分參數(shù)及其意義: FoFjFiPFmVjViMoArea Fix AreaSm Ss NQA還原周轉(zhuǎn)數(shù)量)、Phi---_Po Psi_o Phi_EoPhi_DoPhi_pavABS/RC(單位反應(yīng)中心的吸收光量子通量)、TRo/RC(單位反應(yīng)中心初始捕獲光量子通量)、ETo/RC(單位反應(yīng)中心初始電子傳遞光量子通量)、DIo/RC(單位反應(yīng)中心能量散失)、ABS/CS(單位樣品截面的吸收光量子通量)、TRo/CSoRC/CSx(反應(yīng)中心密度)、PIABS(基于吸收光量子通量的“性能"指數(shù)或稱生存指數(shù))、PIcs(基于截面的“性能"指數(shù)或稱生存指數(shù))

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    QA-再氧化動力學(xué)曲線測量是運(yùn)用STFsingle turnover flash,單周轉(zhuǎn)光閃)測量光系統(tǒng)IIQA再氧化過程中熒光產(chǎn)額的衰減曲線,從而衡量QA傳輸電子的能力。通過曲線擬合可能將光系統(tǒng)II分為快相(Fast phase)、中間相(Middle phase)和慢相(Slow phase),同時獲得各自的振幅(A1A2A3)和時間常數(shù)(T1T2T3)。這是用來深入研究光系統(tǒng)II變化異質(zhì)性的工具,同樣要求檢測器的最高靈敏度達(dá)到100 000/秒以上。

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    這么高的檢測速度在葉綠素?zé)晒鈨x上是可以實(shí)現(xiàn)的,但由于成像CCD元件的成像速度限制,一般葉綠素?zé)晒獬上駜x器根本無法達(dá)到。國際上僅有FluorCam的兩個型號——FluorCam封閉式熒光成像系統(tǒng)和FKM多光譜熒光動態(tài)顯微成像系統(tǒng)通過泵浦成像技術(shù)分別實(shí)現(xiàn)了葉片層次與細(xì)胞層次的OJIPQA-再氧化動力學(xué)曲線的擬合成像測量。

    2019年,捷克科學(xué)院Küpper教授與PSI公司合作,將超高靈敏度成像傳感器與葉綠素?zé)晒獬上窦夹g(shù)結(jié)合,實(shí)現(xiàn)了在640×512圖像分辨率下高達(dá)4000/秒的葉綠素?zé)晒獬上袼俣取_@一技術(shù)實(shí)現(xiàn)了真正的OJIP快速熒光誘導(dǎo)動力學(xué)曲線和QA-再氧化動力學(xué)曲線成像測量

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    后續(xù),Küpper使用這一革新性的技術(shù)成果進(jìn)行了大量關(guān)于重金屬對光合作用抑制機(jī)理的研究。赫爾辛基大學(xué)等則利用這一新技術(shù)開展了擬南芥光系統(tǒng)對臭氧的響應(yīng)機(jī)制等一系列研究。

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    參考文獻(xiàn):

    1.Jedmowski C, et al. 2015. Imaging of fast chlorophyll ?uorescence induction curve (OJIP) parameters, applied in a screening study with wild barley (Hordeum spontaneum) genotypes under heat stress. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology 151: 153-160

    2.Ding S, et al. 2016. Glutathione reductase 2 maintains the function of photosystem II in Arabidopsis under excess light. Biochimica et Biophysica Acta 1857: 665-677

    3.Küpper H, et al. 2019. Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging. Plant Physiology 179: 369-381

    4.Morina F, Küpper H, et al. 2020. Direct inhibition of photosynthesis by Cd dominates over inhibition caused by micronutrient deficiency in the Cd/Zn hyperaccumulator Arabidopsis halleri. Plant Physiology and Biochemistry 155: 252-261

    5.Morales LO, et al. 2021. Ozone responses in Arabidopsis: beyond stomatal conductance. Plant Physiology 186(1): 180-192

     

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